Palabras clave
Extractos etanólicos
Análisis proximal
Metabolitos secundarios
Antioxidante
Categorías
Cómo citar
Métricas de PLUMX
Resumen
La Papaver somniferum L., se ha cultivado desde épocas prehistóricas, debido a sus propiedades farmacéuticas y nutricionales, se le ha dado una aplicabilidad en procesamiento de alimentos, medicina tradicional, medicina ayurvédica e industria farmacéutica. No obstante, se desconocen otras biomoléculas de interés en estas semillas, por lo que con el fin de generar un conocimiento más amplio sobre las semillas Papaver somniferum L., en el presente trabajo se utilizaron sus semillas a las cuales se les determinó el análisis proximal. Consecutivamente, se realizó el análisis fitoquímico. Para la cuantificación de metabolitos secundarios, se realizaron mediante espectrofotometría UV/vis. Para la determinación de la actividad antioxidante se empleó la metodología ABTS•+ (ácido 2,2´-azino-bis(3-etilbenzotiazolin)-6-sulfónico). En los resultados de composición nutricional resalta la presencia de fibra y de proteína con un 56.2 g y 24.6 g, respectivamente; mientras que en el análisis fitoquímico reveló la presencia principalmente de flavonoides y compuestos fenólicos. En la cuantificación de metabolitos secundarios resaltaron Ácidos Fenólicos 0.0825 mg EAC/g MS, Proantocianidinas 0.0658 mg ECT/g MS, Antocianinas 3.0937 mg EC3G/g MS, al igual que su actividad antioxidante con un 87.86 % de inhibición. Por lo que, se concluye que el extracto posee diferentes compuestos bioactivos con gran capacidad antioxidante.
Citas
Abreu y Abreu, A. T., Milke-García, M. P., Argüello-Arévalo, G. A., Calderón-de la Barca, A. M., Carmona-Sánchez, R. I., Consuelo-Sánchez, A., Coss-Adame, E., García-Cedillo, M. F., Hernández-Rosiles, V., Icaza-Chávez, M. E., Martínez-Medina, J. N., Morán-Ramos, S., Ochoa-Ortiz, E., Reyes-Apodaca, M., Rivera-Flores, R. L., Zamarripa-Dorsey, F., Zárate-Mondragón, F., & Vázquez-Frias, R. (2021). Fibra dietaria y microbiota: Revisión narrativa de un grupo de expertos de la Asociación Mexicana de Gastroenterología. Revista de Gastroenterología de México, 86(3), 287-304. https://doi.org/10.1016/j.rgmx.2021.02.004
AOAC International. (2005). Official methods of analysis of AOAC International (18th ed.). AOAC International.
Benítez-Benítez, R., Sarria-Villa, R. A., Gallo-Corredor, J. A., Pérez-Pacheco, N. O., Álvarez-Sandoval, J. H., & Giraldo-Aristizabal, C. I. (2019). Obtención y rendimiento del extracto etanólico de dos plantas medicinales. Revista Facultad de Ciencias Básicas, 15(1), 31–40. https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=7975126
Brand-Williams, W., Cuvelier, M. E., & Berset, C. (1995). Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. LWT – Food Science and Technology, 28(1), 25-30. https://doi.org/10.1016/S0023-6438(95)80008-5
Butnariu, M., Quispe, C., Herrera-Bravo, J., Pentea, M., Sarac, I., Küşümler, A. S., Özçelik, B., Painuli, S., Semwal, P., Imran, M., Gondal, T. A., Emamzadeh-Yazdi, S., Lapava, N., Yousaf, Z., Kumar, M., Eid, A. H., Al-Dhaheri, Y., Suleria, H. A. R., Contreras, M. d. M., … Cho, W. C. (2022). Papaver plants: Current insights on phytochemical and nutritional composition along with biotechnological applications. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2022, Article 2041769. https://doi.org/10.1155/2022/2041769
Calderón de Rzedowski, G. (1991). Familia Papaveraceae (Fascículo 1). Flora del Bajío y de Regiones Adyacentes. Instituto de Ecología, A.C., Centro Regional del Bajío. https://doi.org/10.21829/fb.127.1991.1
Cimpoiu, C., Cristea, V.-M., Hosu, A., Sandru, M., & Seserman, L. (2011). Antioxidant activity prediction and classification of some teas using artificial neural networks. Food Chemistry, 127(3), 1323-1328. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2011.01.091
Cruz, R., Chavez, S. G., & Fernández-Jeri, A. B. (2021). Actividad antioxidante y ácidos grasos de aceite de semillas de siete frutas nativas de la región Amazonas, Perú. Información tecnológica, 32(3), 141-148. https://dx.doi.org/10.4067/S0718-07642021000300141
Drug Enforcement Administration. (2019, noviembre). Unwashed Poppy Seed. https://www.deadiversion.usdoj.gov/drug_chem_info/unwashed_poppy_seed.pdf
García Peris, P., & Velasco Gimeno, C. (2007). Evolución en el conocimiento de la fibra. Nutrición Hospitalaria, 22(2), 20-25. http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0212-16112007000500004&lng=es&tlng=es.
He, F. J., & MacGregor, G. A. (2008). Beneficial effects of potassium on human health. Physiologia Plantarum, 133(4), 725-735. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.2007.01033.x
Hernández-Martínez, A. L., Cervantes-Jauregui, J. A., Cruz-Cruz, D., & Villegas-Gómez, C. (2020). "Chicalote" Argemone ochroleuca Sweet: La Gran Fábrica de Alcaloides. Naturaleza y Tecnología, (1). http://www.naturalezaytecnologia.com/index.php/nyt/article/view/368
Huang, W.-Y., Cai, Y.-Z., & Zhang, Y. (2010). Natural phenolic compounds from medicinal herbs and dietary plants: Potential use for cancer prevention. Nutrition and Cancer, 62(1), 1-20. https://doi.org/10.1080/01635580903191585
Koza, J., & Jurgoński, A. (2023). Partially defatted rather than native poppy seeds beneficially alter lipid metabolism in rats fed a high-fat diet. Scientific Reports, 13(1), 14171. https://doi.org/10.1038/s41598-023-40888-x
Pantano Ladino, L. C., & Urrego Roldán, A. M. (2018). Evaluación de la extracción de aceite de semillas de amapola mediante los métodos Soxhlet y prensado en frío a nivel laboratorio. [Tesis de Licenciatura, Fundación Universidad de América]. https://hdl.handle.net/20.500.11839/6957
Lillo, A., Carvajal-Caiconte, F., Núñez, D., Balboa, N., & Marysol, A. (2016). Cuantificación espectrofotométrica de compuestos fenólicos y actividad antioxidante en distintos berries nativos del Cono Sur de América. RIA: Revista Investigaciones Agropecuarias, 42(2), 168–174. https://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1669-23142016000200009
Manach, C., Scalbert, A., Morand, C., Rémésy, C., & Jiménez, L. (2004). Polyphenols: food sources and bioavailability. The American Journal of Clinical Nutrition, 79(5), 727-747. https://doi.org/10.1093/ajcn/79.5.727
Melo, D., Álvarez-Ortí, M., Nunes, M. A., Espírito Santo, L., Machado, S., Pardo, J. E., & Oliveira, M. B. P. P. (2022). Nutritional and Chemical Characterization of Poppy Seeds, Cold-Pressed Oil, and Cake: Poppy Cake as a High-Fibre and High-Protein Ingredient for Novel Food Production. Foods, 11(19), 3027. https://doi.org/10.3390/foods11193027
Muhammad, A., Akhtar, A., Aslam, S., Khan, R. S., Ahmed, Z., & Khalid, N. (2021). Review on physicochemical, medicinal and nutraceutical properties of poppy seeds: A potential functional food ingredient. Functional Foods in Health and Disease, 11(10), 522-547. https://doi.org/10.31989/ffhd.v11i10.836
Muhammad, W., Ullah, N., Haroon, M., & Abbasi, B. H. (2019). Optical, morphological and biological analysis of zinc oxide nanoparticles (ZnO NPs) using Papaver somniferum L. RSC Advances, 9(51), 29541–29548. https://doi.org/10.1039/C9RA04424H
Muhizi, S., & Kim, I. H. (2021). Effect of dietary poppy (Papaver somniferum L.) seed meal supplementation on growth performance, nutrient digestibility, faecal microbiota, and blood profile in growing-finishing pigs. Journal of Animal and Feed Sciences, 30(1), 58–63. https://doi.org/10.22358/jafs/133958/2021
Padilla, F. C., Rincón, A. M., & Bou-Rached, L. (2008). Contenido de polifenoles y actividad antioxidante de varias semillas y nueces. Archivos Latinoamericanos de Nutrición, 58(3), 303–308). http://www.alanrevista.org/ediciones/2008/3/art-14/
Ramos-Sanchez, R., Hayward, N. J., Henderson, D., Duncan, G. J., Russell, W. R., Duncan, S. H., & Neacsu, M. (2025). Hemp seed-based foods and processing by-products are sustainable rich sources of nutrients and plant metabolites supporting dietary biodiversity, health, and nutritional needs. Foods, 14(5), 875. https://doi.org/10.3390/foods14050875
Re, R., Pellegrini, N., Proteggente, A., Pannala, A., Yang, M., & Rice-Evans, C. (1999). Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biology and Medicine, 26(9-10), 1231-1237. https://doi.org/10.1016/S0891-5849(98)00315-3
Reyes, L. S. R., Fuentes, D. D. P., & Espinosa, H. (2015). Tamizaje fitoquímico de extractos y tinturas al 20 % de la raíz y corteza de Dichrostachys cinerea L. (Marabú). Revista Cubana de Plantas Medicinales, 19(2), 156–166.
Shahidi, F., & Ambigaipalan, P. (2015). Phenolics and polyphenolics in foods, beverages and spices: Antioxidant activity and health effects–A review. Journal of Functional Foods, 18, 820-897. https://doi.org/10.1016/j.jff.2015.06.018
Slavin, J. L. (2013). Fiber and prebiotics: mechanisms and health benefits. Nutrients, 5(4), 1417-1435. https://doi.org/10.3390/nu5041417
Villegas Gómez, C., Hernández-Martínez, A. N., Cervantes-Jáuregui, J., Cruz-Cruz, D., Peña-Cabrera, E., & Vázquez-Guevara, M. A. (2020). Queleritrina: Desde la Medicina Tradicional Mexicana hasta su síntesis y aplicaciones. Naturaleza y Tecnología, (2). http://quimica.ugto.mx/index.php/nyt/article/view/378
Zárate-Martínez, W., González-Morales, S., Ramírez-Godina, F., Robledo-Olivo, A., & Juárez-Maldonado, A. (2021). Efecto de los ácidos fenólicos en el sistema antioxidante de plantas de tomate (Solanum lycopersicum Mill.). Agronomía Mesoamericana, 32(3), 854–868. https://doi.org/10.15517/am.v32i3.45101
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
Derechos de autor 2026 Revista Bio Ciencias